Стоматолог № 3 (34) — 2019, стр. 22-28                                                                                                                            Научные публикации

Особенности клинико-лабораторной диагностики в периодонтологии

Л.Н. Дедоваa, Ю.Л. Денисоваb, А.С. Соломевичc, О.В. Кандрукевичd, П.А. Семижонe, М.В. Апанасовичf

a,bд-р мед. наук, профессор, Белорусский государственный медицинский университет, Минск, Беларусь
c,dканд. мед. наук, доцент, Белорусский государственный медицинский университет, Минск, Беларусь
eканд. биол. наук, РНПЦ эпидемиологии и микробиологии, Минск, Беларусь
fБелорусский государственный медицинский университет, Минск, Беларусь

https://doi.org/10.32993/stomatologist.2019.3(34).2

РЕЗЮМЕ
Цель исследования. Обозначить основные клинико-лабораторные принципы микробиологической диагностики в периодонтологии и определить стоматологические инструменты для рационального извлечения содержимого из периодонтальных карманов у пациентов с болезнями периодонта.
Объекты и методы. Проведено стоматологическое обследование 60 пациентов с клиническими признаками генерализованного периодонтита и глубиной периодонтального кармана 5–6 мм в возрасте 35–44 лет (основная группа) и 140 пациентов без признаков болезней периодонта в возрасте 20–24 года (контрольная группа), обратившихся за стоматологической помощью в ГУ «Республиканская клиническая стоматологическая поликлиника». Для определения рациональности выбора инструментов для извлечения содержимого из периодонтального кармана применяли метод ПЦР-диагностики. Для извлечения содержимого из периодонтального кармана в исследование включили стерильные инструменты: стоматологический зонд, экскаватор №1, периодонтальный пуговчатый зонд ВОЗ, периодонтальный зонд Северная Каролина, межзубной ершик, бумажный штифт.
Результаты исследования и их обсуждение. Представлены основные клинико-лабораторные принципы микробиологической диагностики в периодонтологии: правильный выбор объекта исследования; выбор адекватных диагностических средств; выбор методики исследования; компетенция результатов исследования микробиологической диагностики в периодонтологии. Полученный с помощью всех инструментов биоматериал содержал ДНК микроорганизмов, что свидетельствует о возможности использования для извлечения содержимого из периодонтальных карманов всех инструментов, включенных в исследование. Однако в образцах, прошедших отбор с помощью бумажного штифта, выявлено наибольшее количество ДНК микроорганизмов. По мере убывания ДНК материала приводим последовательность выбора инструментария: бумажный штифт, межзубной ершик (размер 0), периодонтальный пуговчатый зонд ВОЗ, периодонтальный зонд Северная Каролина, стоматологический зонд, экскаватор стоматологический № 1.
Заключение. Основные принципы микробиологической диагностики в периодонтологии дают возможность в постановке диагноза, планировании и оценке результатов лечения. Компетенции диагностики в выборе объекта исследований свидетельствуют о целесообразности изучения содержимого десневой борозды и/или периодонтального кармана у пациентов с болезнями периодонта. ПЦР – среди современных молекулярно-биологических методов – относят к приоритетным. Для извлечения содержимого из периодонтального кармана у пациентов с болезнями периодонта врачу рекомендован дифференцированный выбор рациональных стоматологических инструментов с соблюдением их приоритетности в следующем порядке: бумажный штифт, межзубной ершик (размер 0), периодонтальный пуговчатый зонд ВОЗ, периодонтальный зонд Северная Каролина, стоматологический зонд, экскаватор стоматологический № 1.

Ключевые слова: лабораторная диагностика, периодонтология, микробиология

Литература 

  1. Axelson, P. Periodontal disease. Diagnosis and risk prediction. Quintessense, 2002, vol. 3, pp. 95–119.
  2. Balaban N.Q. [et al.] Bacterial Persistence as a Phenotypic Switch. Science, 2004, vol. 305, no. 5690, pp. 1622–1625.
  3. Dahlen, G. Microbiological diagnostics in oral diseases. Acta Odontol. Scand., 2006, vol. 64, no. 3, pp. 164–168.
  4. Davey M.E., O’Toole G.A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics. Microbiol. Mol. Biol. Rev., 2000, no.64, pp. 847–867.
  5. Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: Survival Mechanisms of Clinically Relevant Microorganisms. CLIN. MIC. REV., 2002, vol. 15, no. 2, pp. 167–193.
  6. Elander R. Industrial production of beta-lactam antibiotics. Applied microbiology and biotechnology, 2003, vol. 61 (56), pp. 385–392.
  7. Elisabeth M., Clara D., Gary C. [et al.] Bacterial diversity in the oral cavity of ten healthy individuals. ISME J., 2010, vol. 4 (8), pp. 962–974.
  8. Fujinaka, H., Takeshita T., Sato H. Relationship of periodontal clinical parameters with bacterial composition in human dental plaque. Archives of Microbiology, 2013, vol. 195, no. 6, pp. 371–383.
  9. Guobis Ž., Kareivienė V., Basevičienė N. [et al.] Microflora of the oral cavity in patients with xerostomia. Medicina (Kaunas), 2011, vol. 47 (12), pp. 646–651.
  10. Haase, G. Investigation of infectious organisms causing pericoronitis of the mandibular third molar. Journal of Oral &Maxillofacial Surgery, 2000, vol. 58, no. 6, pp. 611–616.
  11. Haffajee, A.D., Yaskell T., Torresyap G. et al. Comparison between polymerase chain reaction based and checkerboard DNA hybridization techniques for microbial assessment of subgingival plaque samples. J. Clin. Periodontol., 2009, vol. 36, pp. 642–649.
  12. Haffajee, A.D., Teles R.P., Socransky S.S. Association of Eubacterium nodatum and Treponema denticola with human periodontitis lesions. Oral Microbiol. Immunol., 2006, vol.21, pp. 269¬282.
  13. Haffajee, A.D., Socransky S.S. Microbial etiological agents of destructive periodontal diseases. Periodontol., 1994, vol. 5, pp. 78–111.
  14. Holt. S.C., Ebersole J.L. Porphyromonas gingivalis, Treponema denticola, and Tannerella forsythia: the’red complex’, a prototype polybacterial pathogenicconsortium in periodontitis. Periodontology 2000, 2005, vol. 38, pp. 72–122.
  15. Loesche, W. J., Kazor C.E., Taylor G.W. The optimization of the BANA test as a screening instrument for gingivitis among subjects seeking dental treatment. Journal of Clinical Periodontology, 1997, vol. 24, pp. 718–726.
  16. Palmer R.J.Jr., Stoodley P. Biofilms 2007: broadened horizons and new emphases. J. Bacteriol., 2007, no. 189 (22), pp. 7948–7960.
  17. Perez-Chaparro, P.J., Rouillon A., Minet J., Lafaurie G.I., Bonnaure-Mallet M. A genotypes and PFGE profile patterns in Porphyromonas gingivalis isolates from subjectswith periodontitis. Oral Microbiol Immunol., 2009, vol. 24, pp. 423–426.
  18. Riep, B., Edesi-Neuss L., Claessen F., Skarabis H., Ehmke B., Flemmig T.F., Bernimoulin J.P., Gobel U.B., Moter A. Are putative periodontal pathogens reliable diagnostic markers? J. Clin. Microbiol., 2009, vol. 47, pp. 1705–1711.
  19. Rice S.A. [et al.] Biofilm formation and sloughing in Serratia marcescens are controlled by quorum sensing and nutrient cues. J. Bacteriol, 2005, no. 187, pp. 3477–3485.
  20. Sawhney R., Sharma R., Sharma K. Microbial Colonization on Elastomeric Ligatures during Orthodontic Therapeutics: An Overview. Turk. J. Orthod., 2018, no. 31 (1), pp. 21–25.
  21. Stewart P.S., Costerton J.W. Antibiotic resistance of bacteria in biofilms Lancet, 2001, no. 358, pp. 135–138.
  22. Sukontapatipark W., Agroudi M. A., Selliseth N.J. Bacterial colonization associated with fixed orthodontic appliances: a scanning electron microscopy study. Eur. J. Orthod., 2001, vol. 23, no. 5, pp. 475–484.
  23. Socransky, S.S., Haffajee A.D. Periodontal microbial ecology. Periodontology. 2000, 2005, vol. 38, pp. 135–187.
  24. Suchett-Kaye, G., Jacques Morrier J., Barsotti O. Clinical usefulness of microbiological diagnosis tools in the management of periodontal disease. Research in Microbiology, 2001, vol. 152, pp. 631–639.
  25. Tets V.V., Tets G.V., Vikina D.S. [et al.] Unknown pathogens from the human oral microflora of interest for otorhinolaryngology. Vestn. Otorinolaringol., 2014, vol. 1, pp. 33–36.
  26. Van Winkelhoff, A.J. Loos B.G., Van der Reijden W.A. Porphyromonas gingivalis, Bacteroides forsythus and other putative periodontal pathogens in subjects with and without periodontal destruction. J. Clin. Periodontol., 2002, vol. 29, pp. 1023–1028.
  27. Vandesompele, J., De Preter K., Pattyn F., Poppe B., van Roy N., De Paepe A., Speleman F. Accurate normalization of real time quantitative RT-PCR data by geometric averaging of multiple internal control genes. Genome Biol., 2002, vol. 3, pp. 88–110.

Адрес для корреспонденции:  Е-mail: Dedova.bsmu@mail.ru